細胞因子（如IL-2、TNF-α、IFN-γ等）是免疫系統(tǒng)中的關鍵信號分子，其活性通常用EC50（半數(shù)最大有效濃度）來評估。EC50是指細胞因子達到最大生物學效應一半時所需的濃度，值越小，表明活性越強。

細胞因子EC50通常使用細胞增殖檢測、報告基因檢測、流式檢測、ELISA檢測、生物傳感器及其他方法，下面我們一一介紹相關方法。

●原理

某些細胞因子（如IL-2、IL-6）能促進特定細胞系的增殖，通過檢測細胞數(shù)量或代謝活性（如CCK-8、MTT法）來計算EC50。

●實驗步驟

細胞培養(yǎng)：選擇依賴目標細胞因子的細胞系（如CTLL-2細胞依賴IL-2）。

梯度稀釋：將細胞因子按不同濃度加入培養(yǎng)體系。

檢測增殖：培養(yǎng)48-72小時后，用CCK-8/MTT法測OD值。

計算EC50：用GraphPad Prism等擬合劑量-反應曲線。

●優(yōu)缺點

? 優(yōu)點：直接反映生物學活性，結果可靠。

? 缺點：耗時長（需細胞培養(yǎng)），易受細胞狀態(tài)影響。

●原理

構建攜帶報告基因（如熒光素酶、GFP）的工程細胞系，細胞因子激活信號通路（如STAT、NF-κB）后誘導報告基因表達，通過熒光/發(fā)光強度計算EC50。

●實驗步驟

轉染細胞：用含報告基因的質(zhì)粒轉染細胞（如HEK293T-STAT3-luc）。

刺激細胞：加入不同濃度細胞因子。

檢測信號：用熒光素酶檢測系統(tǒng)測發(fā)光值。

數(shù)據(jù)分析：擬合曲線計算EC50。

●優(yōu)缺點

? 優(yōu)點：靈敏度高，適合高通量篩選。

? 缺點：需基因工程改造細胞，可能受非特異性信號干擾。

●原理

某些細胞因子（如IFN-γ）能誘導細胞表面標志物（如MHC-II）或磷酸化蛋白（如p-STAT1）表達，用流式細胞術定量檢測。

●實驗步驟

刺激細胞：用不同濃度細胞因子處理細胞（如THP-1細胞+IFN-γ）。

抗體標記：用熒光抗體檢測目標蛋白（如抗-pSTAT1-PE）。

流式分析：計算MFI（平均熒光強度），擬合EC50。

●優(yōu)缺點

? 優(yōu)點：單細胞分辨率，可多參數(shù)分析。

? 缺點：設備昂貴，數(shù)據(jù)分析復雜。

●原理

ELISA（酶聯(lián)免疫吸附試驗）可檢測細胞因子濃度，但需注意：ELISA測的是蛋白含量，不一定代表活性！若要測EC50，需結合功能實驗。

●實驗步驟

標準曲線：用重組蛋白梯度稀釋建立標準曲線。

樣本檢測：測待測樣本的OD值，計算濃度。

活性驗證：通常需結合細胞實驗（如增殖或報告基因）。

●優(yōu)缺點

? 優(yōu)點：操作簡單，適合大批量樣本。

? 缺點：無法區(qū)分活性與非活性形式（如結合態(tài)vs游離態(tài)）。

●原理

利用表面等離子共振（SPR）、生物層干涉儀（BLI）等技術，實時監(jiān)測細胞因子與受體的結合動力學，計算EC50。

●實驗步驟（以SPR為例）

固定受體：將細胞因子受體偶聯(lián)至芯片。

注入樣本：不同濃度細胞因子流過芯片。

檢測信號：實時監(jiān)測結合-解離曲線。

計算EC50：擬合結合動力學數(shù)據(jù)。

●優(yōu)缺點

? 優(yōu)點：無需標記，實時監(jiān)測結合活性。

? 缺點：設備昂貴，需優(yōu)化結合條件。

qPCR：檢測細胞因子下游基因表達（如SOCS3），間接反映活性。

細胞遷移實驗：適用于趨化因子（如IL-8）的EC50測定。

蛋白質(zhì)組學/磷酸化組學：全面分析細胞因子調(diào)控的分子網(wǎng)絡。

選擇合適的檢測方法，才能準確評估細胞因子的EC50，為藥物研發(fā)或基礎研究提供可靠數(shù)據(jù)！